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百度百科网页新闻贴吧知道网盘图片视频地图文库资讯采购百科百度首页登录注册进入词条全站搜索帮助首页秒懂百科特色百科知识专题加入百科百科团队权威合作下载百科APP个人中心收藏查看我的收藏0有用+10exm播报讨论上传视频网络流行语exm，网络流行语，是“excuse me”的缩写。 [1]网络上指对方的话或者谈论的事情表示震惊、感觉不可思议或疑惑不解时，打出“exm？”来表示自己的情绪。外文名exm性质网络流行语词语来源是“excuse me”的缩写，原意是当别人说话没有听清时‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌，委婉的要求别人再说一遍。新手上路成长任务编辑入门编辑规则本人编辑我有疑问内容质疑在线客服官方贴吧意见反馈投诉建议举报不良信息未通过词条申诉投诉侵权信息封禁查询与解封©2024 Baidu 使用百度前必读 | 百科协议 | 隐私政策 | 百度百科合作平台 | 京ICP证030173号京公网安备110000020000

excuse me为什么写成exm？ - 知乎

excuse me为什么写成exm？ - 知乎首页知乎知学堂发现等你来答切换模式登录/注册音乐英语如何看待/评价TAexcuse me为什么写成exm？关注者2被浏览247关注问题写回答邀请回答好问题添加评论分享1 个回答默认排序黄大纯乐观开朗很活泼。——希望未来的样子关注简写。就，不明觉厉之类的发布于 2020-03-26 18:39赞同添加评论分享收藏喜欢收起写回答1 个回答被折叠（为什

耶鲁团队bioRxiv发文 | 一个细胞的膨胀：可视化的 “狂飙” - 知乎

耶鲁团队bioRxiv发文 | 一个细胞的膨胀：可视化的 “狂飙” - 知乎切换模式写文章登录/注册耶鲁团队bioRxiv发文 | 一个细胞的膨胀：可视化的 “狂飙”西湖欧米AI-empowered Omics Solutions研究背景及简介肉眼的探索局限人肉眼的可视范围往往存在局限，当涉足细胞微观结构的研究时往往被拒之门外，此时通常需要借助各类高分辨的显微设备等来突破肉眼的限制，从而实现微观层面的研究。荧光显微镜的好处在于提供了高对比度成像和高精度标记，但在样品成像范围内受限，不足以揭示细胞的精细结构。在电子显微镜中，样品的三维图像是可行的，然而往往需要几天到几周的连续数据采集以生成这些样品的图像。有什么方法可以打破仪器的限制？膨胀8000倍的细胞最近的1篇来自耶鲁大学Joerg Bewersdorf教授团队发布在bioRxiv上的研究报道，创新式地发明了一种名为“Unclear Microscopy”的技术，可以用于肉眼细胞的可视化！图1 文章标题BioRxiv: Unclearing Microscopy一个典型的Hela细胞，直径约40μm，如果将其线性扩展20倍，即体积扩展8000倍，则被纳入到肉眼的可视化范围内。然而随着细胞的膨胀，单个细胞的蛋白质含量（约1.1mM）将被稀释8000倍（约140nM）。这是一个难点，人眼的对比灵敏度有限，即使在理想条件下，也需要至少410倍高浓度（58μM）的高吸收性染料才能检测50μM宽和厚的物体。研究者最初的灵感来源于2015年的麻省理工学院Edward Boyden教授发表的一篇Science文章“Expansion Microscopy”，此后该团队如何就运用水凝胶技术实现细胞的放大上，不断改进创新，期间发表数篇文章，其中近期发表的这篇文章技术证明了以前只能通过超高分辨率荧光或电子显微镜方法才能获得的细胞3D超微结构，现通过将细胞的物理放大与染色相结合，即可产生可见的细胞对比度，使得微观结构最终可以通过借助普通的光学显微镜观察到。研究样本样本：Hela细胞，鼠脑；技术流程：使用Pan-ExM技术将细胞放大相应的倍数，用与生物素偶联的胺反应性NHS酯配体（NHS-PEG4-Biotin）进行染色，并与辣根过氧化物酶偶联的链霉亲和素（ST-HRP）进行孵育，将水凝胶样品切成约1mm的厚度，并用DAB或金属银清除，用水洗涤样品后可直接可视化。图2 Unclaring Microscopy基本工作流程研究结果1.手机拍摄下清晰可见细胞结构在典型的室内光线条件下，使用标准手机拍摄，未清洁的凝胶显示了单个哺乳动物细胞及其微观结构。研究发现金属银和DAB基质分别产生强烈的黑色和棕色显色对比，我们可以用肉眼非常容易地辨别细胞边界、细胞接触部位、细胞胞浆和细胞核。图3 手机拍摄下的细胞膨胀后图片2. 使用OI-DIC显微镜可观测到超微结构研究使用OI-DIC显微镜对1mm厚的膨胀和不透明的脑组织样本进行成像，发现可以观测到超微结构，包括线粒体的精细结构，推测的内质网小管、核仁等。图4 使用OI-DIC显微镜拍摄的脑组织中的3D超微结构文章小结文章末尾，作者也提到了该篇工作代表了用肉眼观察细胞微观结构的第一个有记录的例子，Unclearing Microscopy为广大公众也提供了一个机会，能让其感受到微观世界的魅力。图5 细胞经水凝胶膨胀，染色技术将细胞成分颜色对比度提高10w倍，因此细胞肉眼可见西湖欧米空间蛋白质组学——当“膨胀”碰上“蛋白质组学”西湖欧米自2022年9月29日以来，推出可膨胀的空间蛋白质组学服务ProteomEx，通过将组织样本结合水凝胶技术进行膨胀，结合蛋白质组学，精准实现空间位置的取样！目前，相关技术文章发表于Nature Communications上。图6 西湖欧米膨胀蛋白组文章 1. ProteomEx：膨胀512倍的细胞该技术最大可实现横向膨胀8倍，即体积膨胀512倍！在该膨胀范围下，最低可实现160个细胞的检测。2. ProteomEx：高兼容性ProteomEx空间蛋白质组学可进行多种组织样本的膨胀，如脑、肝、乳腺、肺等，并兼容多种染色方法。图7 膨胀胶与多种组织的高兼容性3. ProteomEx：成功实现不同脑区的空间蛋白质组学研究该篇文章将膨胀蛋白质组学技术应用于小鼠阿尔兹海默症的应用中，成功实现不同脑区蛋白质表达的检测。图8 基于膨胀的空间蛋白质组学技术：阿尔兹海默症小鼠应用实例在近几年的组学研究中，空间组学研究成果不断涌现，正逐渐成为一个新风口。组织异质性的解析，是近年来颇为热门的话题。若您对西湖欧米基于膨胀的空间蛋白质组服务感兴趣，欢迎您来电咨询。编译：江燕审校：刘晶晶如有意向，欢迎咨询联系我们 CONTACT US：邮箱：service@westlakeomics.com座机：0571-86780630参考文献：[1] Ones M’Saad, Michael Shribak, Joerg Bewersdorf. Unclearing Microscopy [J]. BioRxiv, 2022.[2] https://www.the-scientist.com/news-opinion/new-swelling-technique-makes-cells-visible-to-the-naked-eye-70902[3]Li L, Sun C, Sun Y, et al. Spatially resolved proteomics via tissue expansion [J]. Nature Communications. 2022, 13(1):7242. 发布于 2023-03-02 13:38・IP 属地浙江细胞可视化蛋白质组学赞同 1添加评论分享喜欢收藏申请

膨胀显微成像技术的原理及应用

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《Nature Methods》水凝胶基扩展显微镜为探索更多挑战打开了大门！ - 知乎

《Nature Methods》水凝胶基扩展显微镜为探索更多挑战打开了大门！ - 知乎切换模式写文章登录/注册《Nature Methods》水凝胶基扩展显微镜为探索更多挑战打开了大门！水凝胶更多原创内容欢迎关注微信公众号「水凝胶」膨胀显微镜（ExM）由 Ed Boyden 的团队于 2015 年首次推出，是一种超分辨率技术，可以实现低于衍射极限的空间分辨率。与其他严重依赖先进光学系统的超分辨率方法不同，ExM主要使用传统显微镜进行操作。ExM 中的高分辨率是通过样品的物理放大来实现的。荧光标记的分子与水凝胶交联，随着水凝胶的膨胀和各向同性膨胀，信号在三个维度上几乎各向同性地拉伸。在对膨胀系数进行校正和失真分析之后，在传统的共聚焦显微镜上，在典型的大约四倍膨胀下，可以达到 70 nm 的分辨率。近年来，ExM进一步与其他超分辨率显微镜方法相结合，例如受激发射耗尽显微镜或单分子定位显微镜，以达到20 nm以下的分辨率。在本期Nature Methods 中，Laporte 等人 3 提出了一种令人兴奋的 ExM 类型，它提供了避免重化学固定的新选择，但仍然可以通过将细胞结构保持在其天然状态来实现高分辨率成像。在这项工作中，作者应用了传统的冷冻替代冷冻固定，并将其与超微结构 ExM 技术相结合，其中目标在水凝胶膨胀后被荧光标记（图 1）。Laporte 等人 3 通过观察不同的结构验证了他们的新技术（称为 cryo-ExM）的准确性和可重复性：例如，内质网、微管、线粒体和液-液相分离的类核糖体。这些结构的完整性和荧光性在扩展样品中也得到了很好的证实。此外，从技术上讲，这种组合遵循了ExM 的传统，因为它可以很容易地应用于许多实验室，而无需自动插入冷冻系统或复杂的光学系统。图1：水凝胶扩展显微镜的原理。cryo-ExM 与传统 ExM 有何不同？ExM 从细胞或组织的一系列化学固定开始，很大程度上依赖于这种固定的质量。广泛使用的多聚甲醛或用冷甲醇沉淀蛋白质可能会改变样品形态，因此可能会导致膨胀后的结构扭曲或破碎。因此，化学固定协议需要针对 ExM 中的许多特定应用进行优化，以消除固定或标记伪影，并且通常还需要使用其他超分辨率技术或电子显微镜对样品进行比较以确认其结构。然而，Cryo-ExM 站在冷冻固定的肩膀上，这已通过电子显微镜和其他超分辨率方法得到广泛证明，可以在分子尺度上保留许多亚细胞结构的天然结构。凭借这一优势，cryo-ExM 大大降低了以更高分辨率研究尚未深入研究的样品的障碍，使其适用范围更广。相关论文以题为Expansion microscopy opens the door to exploring more challenges发表在《Nature Methods》上。通讯作者是马克斯普朗克分子细胞生物学和遗传学研究所Mengfei Gao。参考文献：http://doi.org/10.1038/s41592-022-01396-4编辑于 2022-01-29 21:38自然科学显微镜《自然》（Nature）赞同 2添加评论分享喜欢收藏申请

Expansion microscopy: principles and uses in biological research | Nature Methods

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Published: 20 December 2018

Expansion microscopy: principles and uses in biological research

Asmamaw T. Wassie1,2,3,4 na1, Yongxin Zhao4,5 na1 & Edward S. Boyden1,2,3,4,6,7

Nature Methods

volume 16, pages 33–41 (2019)Cite this article

53k Accesses

245 Citations

86 Altmetric

Metrics details

Subjects

Molecular neuroscienceSuper-resolution microscopy

AbstractMany biological investigations require 3D imaging of cells or tissues with nanoscale spatial resolution. We recently discovered that preserved biological specimens can be physically expanded in an isotropic fashion through a chemical process. Expansion microscopy (ExM) allows nanoscale imaging of biological specimens with conventional microscopes, decrowds biomolecules in support of signal amplification and multiplexed readout chemistries, and makes specimens transparent. We review the principles of how ExM works, advances in the technology made by our group and others, and its applications throughout biology and medicine.

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Fig. 1: ExM concept and example outcomes.Fig. 2: Applications of ExM in biology and medicine.Fig. 3: ExM decrowds biomolecules, facilitating post-expansion staining, signal amplification, and multiplexed readout.Fig. 4: Results of 25-nm-resolution imaging of neural circuitry and synapses with iExM.

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Download referencesAcknowledgementsE.S.B. acknowledges the NIH (1R01NS102727, 1R01EB024261, 1R41MH112318, 1R01MH110932, 1RM1HG008525, and Director's Pioneer Award 1DP1NS087724), the Open Philanthropy Project, DARPA, John Doerr, the NSF (grant 1734870), the MIT Aging Brain Initiative/Ludwig Foundation, the HHMI-Simons Faculty Scholars Program, IARPA D16PC00008, the US Army Research Laboratory and the US Army Research Office under contract/grant number W911NF1510548, the US–Israel Binational Science Foundation (grant 2014509), the MIT Media Lab, the MIT Brain and Cognitive Sciences Department, and the McGovern Institute. A.T.W. acknowledges the Hertz Foundation Fellowship.Author informationAuthor notesThese authors contributed equally: Asmamaw T. Wassie and Yongxin Zhao.Authors and AffiliationsDepartment of Brain and Cognitive Sciences, Massachusetts Institute of Technology, Cambridge, MA, USAAsmamaw T. Wassie & Edward S. BoydenDepartment of Biological Engineering, Massachusetts Institute of Technology, Cambridge, MA, USAAsmamaw T. Wassie & Edward S. BoydenMcGovern Institute, Massachusetts Institute of Technology, Cambridge, MA, USAAsmamaw T. Wassie & Edward S. BoydenMedia Lab, Massachusetts Institute of Technology, Cambridge, MA, USAAsmamaw T. Wassie, Yongxin Zhao & Edward S. BoydenDepartment of Biological Sciences, Carnegie Mellon University, Pittsburgh, PA, USAYongxin ZhaoKoch Institute, Massachusetts Institute of Technology, Cambridge, MA, USAEdward S. BoydenCenter for Neurobiological Engineering, Massachusetts Institute of Technology, Cambridge, MA, USAEdward S. BoydenAuthorsAsmamaw T. WassieView author publicationsYou can also search for this author in

PubMed Google ScholarYongxin ZhaoView author publicationsYou can also search for this author in

PubMed Google ScholarEdward S. BoydenView author publicationsYou can also search for this author in

PubMed Google ScholarContributionsA.T.W., Y.Z., and E.S.B. all contributed to the writing of the manuscript and have read and agreed to its content.Corresponding authorCorrespondence to

Edward S. Boyden.Ethics declarations

Competing interests

E.S.B. is a co-inventor on multiple patents related to ExM and is also a co-founder of a company (http://extbio.com/) commercializing ExM. Y.Z. and A.T.W. are inventors on several inventions related to ExM.

Additional informationPublisher’s note: Springer Nature remains neutral with regard to jurisdictional claims in published maps and institutional affiliations.Supplementary InformationSupplementary InformationSupplementary Tables 1 and 2, and Supplementary Notes 1 and 2Rights and permissionsReprints and permissionsAbout this articleCite this articleWassie, A.T., Zhao, Y. & Boyden, E.S. Expansion microscopy: principles and uses in biological research.

Nat Methods 16, 33–41 (2019). https://doi.org/10.1038/s41592-018-0219-4Download citationReceived: 15 February 2018Accepted: 10 October 2018Published: 20 December 2018Issue Date: January 2019DOI: https://doi.org/10.1038/s41592-018-0219-4Share this articleAnyone you share the following link with will be able to read this content:Get shareable linkSorry, a shareable link is not currently available for this article.Copy to clipboard

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